Entschlüsselung der Funktion/Dysfunktion von Motorproteinen mittels Einzelmolekül-Biophysik.
Forschungsschwerpunkte
Zytoskelettmotoren sind ATP-abhängige krafterzeugende biologische Maschinen, die verschiedene Aufgaben ausführen, wie z.B. intrazellulären Frachttransport, Muskelkontraktion, Zellteilung und Bewegung ganzer Zellen.
Das nicht-prozessive Myosin-II-Motorprotein ist verantwortlich für die Kontraktion von Skelettmuskelfasern und Herzmuskelzellen, während prozessive aktinbasierte Motorproteine, wie das Myosin V, am intrazellulären Transport beteiligt sind. Das Hauptziel unserer Forschung ist es, ein detailliertes Verständnis der Mechanismen zu gewinnen, mit denen verschiedene Motoren unterschiedliche Rollen erfüllen.
Funktionsstörungen von Motorproteinen haben entscheidende Einflüsse in nahezu allen Aspekten der zellulären Physiologie und sind eng mit verschiedenen Myopathien verbunden, unter anderem mit der Herzerkrankung der familiären Kardiomyopathie (FHC), von der 1 von 200 Personen weltweit betroffen ist. Klinische Phänotypen weisen eine hohe Variabilität auf, die von asymptomatisch über schnell fortschreitendes Herzversagen bis hin zu plötzlichem Herztod bei jungen Menschen und Leistungssportlern reicht.
Wir wollen ein umfassendes Verständnis der primären funktionellen Veränderung des kardialen β-Myosins als Folge von Punktmutationen erlangen. Die Dysfunktion von Motorproteinen führt zu einer Desorganisation des Myokards, die zur Hypertrophie des linken Ventrikels beiträgt.
Unsere experimentellen Ansätze umfassen biophysikalische Einzelmoleküluntersuchungen, wie Total Internal Reflection Fluorescence Microscopy (TIRFM), Zero-Mode-Lichtwellenleiter und optische Fallen, um präzise kinetische und mechanische Einblicke in Motorproteine zu erhalten.
Förderung
- German Research Foundation (DFG)
- Hochschulinterne Förderung (HilF, MHH)
- Fritz Thyssen Foundation
- Modulatorische Rolle von Unterkomponenten der Motorproteine
- Entwicklung neuer Nano-Biohybrid-Motoren auf Basis natürlicher Bausteine
- Einzelmoleküluntersuchungen von mutierten Myosin-Motorproteinen, die an der humanen hypertrophen Kardiomyopathie beteiligt sind
- Epigenetische Regulation der Physiologie von quergestreiften Muskeln durch Ubiquitin-ähnliche Proteine
Wir verwenden eine Vielzahl von innovativen experimentellen Ansätzen.
Für die eingehende Analyse der Funktion von Motorproteinen verwenden wir hauptsächlich biophysikalische Einzelmoleküluntersuchungen, wie Total Internal Reflection-Fluoreszenzmikroskopie (TIRF-M), optische Fallen und Zero-Mode-Lichtwellenleiter, um präzise kinetische und mechanische Einblicke in Motorproteine zu erhalten.
Für unsere Projekte zur epigenetischen Regulation der Muskelphysiologie verwenden wir verschiedene biochemische und molekularbiologische Werkzeuge, wie In-Vivo-Co-IP-, Protein-Netzwerkanalyse mittels quantitativer Massenspektrometrie und Genexpressions-Array-System, Chromatin-Immunpräzipitation und ChIPseq.
Selected publications
- Acto-Myosin Cross-Bridge Stiffness Depends on the Nucleotide State of Myosin II. Wang T, Brenner B, Nayak A, and Amrute-Nayak M. Nano Letters, 2020 Sep 15. doi: 10.1021/acs.nanolett.0c02960. [Online ahead of print] PubMed
- Transformation of the Nonprocessive Fast Skeletal Myosin II into a Processive Motor. Amrute-Nayak M*, Nayak A, Steffen W, Tsiavaliaris G, Scholz T, Brenner B. Small. 2019 Jan 18:e1804313. doi: 10.1002/smll.201804313. (* - Corresponding author, IF - 9.598); PubMed
- MARK4 regulates NLRP3 positioning and inflammasome activation through a microtubule-dependent mechanism. Li X, Thome S, Ma X, Amrute-Nayak M, Finigan A, Kitt L, Masters L, James JR, Shi Y, Meng G, Mallat Z. Nat Commun. 2017 Jun 28. (IF - 12.353)
- ATP turnover by individual myosin molecules hints at two conformers of the myosin active site. Amrute-Nayak M, Lambeck KA, Radocaj A, Huhnt HE, Scholz T, Hahn N, Tsiavaliaris G, Walter WJ, Brenner B. Proc Natl Acad Sci U S A. 2014 Feb 18. (IF - 9.504)
- Single-molecule assays reveal that RNA localization signals regulate dynein-dynactin copy number on individual transcript cargoes. Amrute-Nayak M, Bullock SL. Nat Cell Biol. 2012 Feb 26. (IF - 20.06)
- Targeted optimization of a protein nanomachine for operation in biohybrid devices. Amrute-Nayak M, Diensthuber RP, Steffen W, Kathmann D, Hartmann FK, Fedorov R, Urbanke C, Manstein DJ, Brenner B, Tsiavaliaris G. Angew Chem Int Ed Engl. 2010. (IF - 12.10)
Labor Mitarbeiter
Für meinen Master (M. Sc.) habe ich Biochemie an der Universität Pune, Indien, studiert.
Für meine Promotion habe ich mich dem Forschungslabor von Prof. Bernhard Brenner an der Medizinischen Hochschule Hannover (MHH) angeschlossen. Hier habe ich ein Projekt durchgeführt, bei dem molekulare Motorproteine mit der Einzelmolekül-Fluoreszenzdetektionstechnik "Total Internal Reflection Fluorescence Microscopy" untersucht wurden.
Für meine Postdoktorandenzeit bin ich zum Medical Research Council - Laboratrory of Molecular Biology (MRC-LMB), Cambridge, Großbritannien, gewechstelt, um mit Dr. Simon Bullock zusammenzuarbeiten. Dabei habe ich den molekularen Mechanismus des cytoplasmatischen mRNA-Transports untersucht. Wir haben versucht, die Wechselwirkung von Lokalisierungssignalen mit Mikrotubuli-basierten Motoren aufzuklären, die die mRNA durch ein komplexes Zytoskelett-Netzwerk führen und unterschiedliche mRNAs sortieren.
2017 habe ich meine eigene Arbeitsgruppe an der Medizinischen Hochschule Hannover gegründet. Das Hauptaugenmerk meines Labors liegt auf der Untersuchung von molekularen Mechanismen, die der Motorproteinfunktion zugrunde liegen. Darüber hinaus untersuchen wir natürlich vorkommende Mutationen in sarkomerischen Proteinen, die an der hypertrophen Kardiomyopathie (HCM) beim Menschen beteiligt sind.
Tianbang hat sein Doktorat in der Arbeitsgruppe von PD Dr. Walter Steffen, am Institut für Molekular und Zellphysiologie, Medizinische Hochschule Hannover, abgeschlossen.
Sein Promotionsprojekt umfasste:
- Untersuchung des Krafterzeugungsmechanismus von cytoplasmatischem Dynein
- Entwicklung der Technik der optischen Falle
Seit Juli 2018 arbeitet er als Postdoktorand in meiner Arbeitsgruppe.
Sein Projekt beinhaltet die Untersuchung der 'Regulationsmechanismen, die die Funktion von Myosin-II-Motorproteinen steuern, unter Verwendung von optischen Fallen für Einzelmoleküle'.
Ausgewählte Publikationen:
- Increased Cell-Matrix Adhesion upon Constitutive Activation of Rho Proteins by Cytotoxic Necrotizing Factors from E. coli and Y. pseudotuberculosis. Martin May, Tanja Kolbe, Tianbang Wang, Gudula Schmidt, and Harald Genth. J Signal Transduct. 2012;2012:570183.
- Difference in F-actin depolymerization induced by toxin B from the Clostridium difficile strain VPI 10463 and toxin B from the variant Clostridium difficile serotype F strain 1470. May M, Wang T, Müller M, Genth H. Toxins (Basel). 2013 Jan 11;5(1):106-19.
- Mg2+-free ATP Regulates Native Cytoplasmic Dynein’s Processivity, VA Behrens, WJ Walter, C Peters, T Wang, B Brenner1, MA Geeves4, T Scholz1,5, W Steffen. FEBS Lett. 2018 Dec 21..
- The force generation of cytoplasmic dynein is load dependent. T Wang, WJ Walter, VA Behrens, W Steffen. Manuscript in preparation.
Emulla hat sein Masterstudium in Biologie an der Middle East Technical University (METU) in Ankara, Türkei, abgeschlossen.
Im Oktober 2020 hat er sich meiner Arbeitsgruppe am Institut für Molekular und Zellphysiologie angeschlossen, um seine Doktorat abzuschliessen.
Sein Projekt beinhaltet die Untersuchung von Mutationen im kardialen Myosin II, die mit Kardiomyopathien verbunden sind, unter Verwendung von Einzelmolekül-Untersuchungsmethoden.
Technische Assistentin
Wissenschaftliche Hilfskraft
Fabius Grünhagen
Mitglied des Forschungsteams als Student des FWJ (Freiwilliges Wissenschaftliches Jahr) von Oktober 2018 bis August 2019. Fabius studiert derzeit Physik an der Universität Zürich.
